всероссийский научно-практический журнал
  • ISSN 2072-8158
  • -
  • Роспечать: 48626
  • Пресса России: 44722

ПОКАЗАТЕЛИ СИСТЕМЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ ЗАЩИТЫ У ДВУСТВОРЧАТЫХ ПРЕСНОВОДНЫХ МОЛЛЮСКОВ DREISSENA POLYMORPHA (PALLAS, 1771) ИЗ УЧАСТКОВ РЫБИНСКОГО ВОДОХРАНИЛИЩА С РАЗЛИЧНОЙ СТЕПЕНЬЮ АНТРОПОГЕННОГО ЗАГРЯЗНЕНИЯ

Опубликовано в журнале «Вода: химия и экология» № 5 за 2017 год, стр. 38–43.
Рубрика: Гидробиология

 

Климова Я.С. младший научный сотрудник, ФГБУН Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
Чуйко Г.М. доктор биологических наук, профессор, заведующий лабораторией физиологии и токсикологии водных животных, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук

Аннотация:
У двухстворчатых пресноводных моллюсков D. polymorpha из загрязненного Шекснинский плеса и относительно чистого Волжского плеса Рыбинского водохранилища были изучены показатели системы антиоксидантной защиты: активность каталазы, глутатионредуктазы (GR), глутатион-S-трансферазы (GST); уровень низкомолекулярного антиоксиданта — восстановленного глутатиона и содержание маркера перекисного окисления липидов — малонового ди-альдегида (MDA). Антиоксидантный ответ на действие загрязнения у D. polymorpha из Шекснинского плеса выражался в активации антиоксидантных ферментов GST, GR и усилении процессов перекисного окисления липидов, о чем свидетельствует накопление в их тканях MDA. Различные токсичные поллютанты, присутствующие в экосистеме Шекснинского плеса стимулировали усиление процессов перекисного окисления липидов. Активизация антиоксидантных ферментов при этом является защитным адаптивным механизмом, предотвращающим развитие окислительного стресса при действии антропогенного загрязнения.

Ключевые слова: загрязнение, моллюски, система антиоксидантной защиты

Ссылка для цитирования:
Климова Я.С., Чуйко Г.М. ПОКАЗАТЕЛИ СИСТЕМЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ ЗАЩИТЫ У ДВУСТВОРЧАТЫХ ПРЕСНОВОДНЫХ МОЛЛЮСКОВ DREISSENA POLYMORPHA (PALLAS, 1771) ИЗ УЧАСТКОВ РЫБИНСКОГО ВОДОХРАНИЛИЩА С РАЗЛИЧНОЙ СТЕПЕНЬЮ АНТРОПОГЕННОГО ЗАГРЯЗНЕНИЯ // Вода: химия и экология. — 2017. — № 5. — c. 38–43. — http://watchemec.ru/article/28533/

Литература:
1. Bocchetti R. Contaminant accumulation and biomarker
responses in caged mussels, Mytilus galloprovincialis,
to evaluate bioavailability and toxicological eff ects of
remobilized chemicals during dredging and disposal
operations in harbour areas / R. Bocchetti, D. Fattorini, B.
Pisanelli, S. Macchia, L. Oliviero, F. Pilato, D. Pellegrini,
F. Regoli // Aquat. Toxicol. 2008. №89. P. 257-266.
2. Livingstone D.R. Oxidative stress in aquatic organisms
in relation to pollution and aquaculture // Revue Méd.
Vét. 2003. V. 154. №6. P. 427-430.
3. Manduzio H. The point about oxidative stress in
molluscs / B. Rocher, F. Durand, C. Galap, F. Leboulenger
// Inverteb. Surv. J. ISSN 1824-307. 2005. №2. P. 91-104.
4. Флёров Б.А. Комплексная оценка состояния донных
отложений Рыбинского водохранилища / Б.А. Флёров,
И.И. Томилина, Л. Кливленд, А.И. Баканов,
М.В. Гапеева // Биол. внутр. вод. 2000. №2. С. 148-155.
5. Баканов А.И. Оценка качества донных отложе-
ний водохранилищ Верхней Волги с использовани-
ем элементов триадного подхода / А.И. Баканов, М.В.
Гапеева, И.И. Томилина // Биол. внутр. вод. 2000. №1.
С. 102-109.
6. Чуйко Г.М. Пространственное распределение и ка-
чественный состав полихлорированных бифенилов
(ПХБ) и хлорорганических пестицидов (ХОП) в дон-
ных отложениях и леще (Abramis brama L.) Рыбинского
водохранилища / Г.М. Чуйко, В.В. Законов,
А.А. Морозов, Е.С. Бродский, А.А. Шелепчиков,
Д.Б. Фешин // Биол. внутр. вод. 2010. №2. С. 98-108.
7. Гапеева М.В. Тяжелые металлы в воде и донных от-
ложениях Рыбинского водохранилища // Вода: химия
и экология 2013. №5. С. 3-7.
8. Carlberg I. Glutathione reductase / I. Carlberg,
B. Mannervik // Met. in Enzy. 1985. V. 113. P. 484-489.
9. Sheehan D. Drugmetabolism enzymes of mussels as
bioindicators of chemicapollution / D. Sheehan, Mc
Intosh, J. Power, A., P.J. Fitzpatrick // Biochem. Soc.
Trans. 1995. V. 23. P. 419- 422.
10. Меньщикова Е.Б. Окислительный стресс.
Проантиоксиданты и антиоксиданты В.З. /
Е.Б.Меньщикова, Н.К. Ланкин, И.А. Зенков,
Н.Ф. Бондарь, В.А. Круговых, Н.Ф. Труфакин. М.:
Слово, 2006. 556 с.
11. Герман А.В. Хлорорганические соединения в
донных отложениях, бентосе и рыбе Волжского
плеса Рыбинского водохранилища / А.В. Герман,
В.В. Законнов, А.А. Мамонтов // Водные ресурсы.
2010. Т. 37. №1. С. 84-88.
12. Властов Б.В. Диагноз пола у живых дрейссен и не-
которые данные по половому циклу у этого моллюска
/ Б.В. Властов, А.А.Качанова // Зоологический жур-
нал. 1959. Т. 38. №7. С. 991-1005.
13. Королюк М.А. Метод определения активности ка-
талазы / М.А. Королюк, Л.И. Иванова, И.Г. Майорова,
В.Е. Токарев // Лаб. дело. 1988. №1. С. 16-19.
14. Habig W.H. Glutathion-S-transpherase: the fi rst step
in mercapture acid formation / W.H. Habig, M.J. Pabst,
W.B Jacoby // J. Biol. Chem. 1974. V. 249. P. 7130-7139.
15. Regoli F. Glutathione, glutathione-dependent and
antioxidant enzymes in mussel, Mytilis galloprovincialis,
exposed to metals under fi eld and laboratory conditions:
implications for the use of biochemical biomarkers /
F. Regoli, G. Principato // Aquat. Toxicol. 1995.
V. 31. P. 143-164.
16. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the
quantitation of microgram quantities of protein utilizing
the principal of protein dye binding. // Anal. Biochem.
1976. V. 72. P. 248-254.
17. Moron M.S. Levels of glutathione, glutathione
reductase and glutathione s-transferase activities in rat
lung and liver / M.S. Moron, J.W. Depierre, B. Mannervik
// Biochim. Biophys. Acta. 1979. V. 582. P. 67-78.
18. Cтальная И.Д. Методы определения малоново-
го диальдегида с помощью тиобарбитуровой кисло-
ты / И.Д. Стальная, Т.Г. Гаришвили // Современные
методы в биохимии под ред. В.Н.Ореховича., М.:
Медицина, 1977. 392 с.
19. Huggett R.J. Biomarkers: biochemical, physiological,
and histological markers of anthropogenic stress /
R.J. Huggett, R.A. Kimerle, P.M. Mehrle, Jr. H.L.
Bergman. Boca Raton — Ann Arbor — London — Tokyo:
Lewis Publishers. 1992. 347 p.
20. Livingstone D.R. Contaminant-stimulated reactive
oxygen species production and oxidative damage in
aquatic organisms // Mar. Pollut. Bull. 2001. V. 42.
P. 656-666.
21. Binelli A Does zebra mussel (Dreissena polymorpha)
represent the freshwater counterpart of Mytilus in
ecotoxicological studies / A. Binelli, C. Della Torre,
S. Magni, M. Parolini // Environ. Pollut. 2015. V. 196.
P. 386-403.
22. Чуйко Г.М. Биомаркеры в гидроэкотоксиколо-
гии: принципы, методы и методология, практика ис-
пользования // Экологический мониторинг. Ч. VIII.
Современные проблемы мониторинга пресноводных
экосистем: учебное пособие / Под ред. Д.Б. Гелашвили,
Г.В. Шургановой. Нижний Новгород: Нижегородский
госуниверситет (ННГУ).2014. с. 309 — 326.
23. Sole M. Assessment of the results of chemical analyses
combined with the biological eff ects of organic pollution
on mussels // Trend. in Analyt. Chem.. 2000. V. 19. №1.
P. 1-9.
24. Richardson B.J. Antioxidant responses to polycyclic
aromatic hydrocarbons and organochlorine pesticides
in green-lipped mussels (Perna viridis): Do mussels
‘‘integrate» biomarker responses? / B.J. Richardson,
E. Mak, B. De Luca-Abbott Sharon, M. Martin,
K. McClellan, K.S. Lam Paul // Mar. Poll. Bull. 2008.
V. 57. P. 503-514.
25. Binelli A. Multi-biomarker approach to investigate
the state of contamination of the R. Lambro / R. Po
confl uence (Italy) by zebra mussel (Dreissena polymorpha)
/ A. Binelli, D. Cogni, M. Parolini, A. Provini // Chem.
2010. V. 79. P. 518-528.
26. Faria M. Contaminant accumulation and multibiomarker
responses in fi eld collected zebra mussels
(Dreissena polymorpha) and crayfi sh (Procambarus
clarkii), to evaluate toxicological eff ects of industrial
hazardous dumps in the Ebro river (NE Spain) /
M. Faria, D. Huertas, D.X. Soto, J.O. Grimalt, J. Catalan,
M.C. Riva, C. Barata // Chem. 2010. V. 78. P. 232-240.